Введение. При сокращении промышленных уловов лососевых огромное значение принадлежит рыбоводным заводам по воспроизводству запасов этих видов промысловых рыб. В условиях искусственного выращивания лососевых часто отмечают поражения глаз, которые приводят к снижению уровня адаптации рыб в естественных условиях. Диагностика патологий позволяет классифицировать их по воздействующему фактору и разработать лечебные и профилактические мероприятия.
Цель исследования. Поиск и обобщение научных публикаций по проблеме патологии глаз у лососевых на предприятиях, занимающихся промышленным разведением и их товарным выращиванием или воспроизводством, в странах Азии, Америки, Европы и в Российской Федерации.
Материалы и методы. Проведен поиск русско- и англоязычных статей в наукометрических базах данных PubMed, Scopus, Web of Science, eLIBRARY. RU. Для подготовки обзора была использована информация из 44 научно-исследовательских работ, опубликованных в период с 1975 по 2024 г.
Результаты. Показано, что поражение глаз у атлантического лосося, кумжи, радужной форели в виде непаразитарной катаракты (помутнение хрусталика), кератопатии (помутнение роговицы), одно- или двухстороннего выпадения глазного яблока регистрируется на заводах по воспроизводству водных биологических ресурсов и на объектах аквакультуры в Северо-Западном регионе Российской Федерации, а также в ряде зарубежных стран. Отмечено, что поражение глаз влечет за собой снижение иммунофизиологического статуса и темпов роста в условиях аквакультуры, уменьшение количества полноценной рыбы, увеличение кормовых затрат и выпуск неполноценной рыбы в естественные водоемы с рыбоводных заводов, а иногда ее гибель. Представлена основная информация о факторах, способствующих развитию глазных патологий у лососевых. Проведен анализ лечебно-профилактических мероприятий, применяемых при поражении глаз, показана значимость дифференцированного подхода к данной проблеме в зависимости от действующего фактора.
Заключение. В мировой ветеринарной и ихтиопатологической практике проблема выпадения глаз у рыбы недостаточно изучена, количество исследований на эту тему ограниченно. В данном обзоре проанализированы и дифференцированно представлены основные факторы, способствующие развитию глазных патологий у лососевых, выявление которых позволит осуществить раннюю диагностику, определить и разработать меры профилактики или эффективные схемы лечения, что, в свою очередь, приведет к сохранению здоровья рыб, повышению продуктивности рыбоводных предприятий и снижению экономических потерь.
Идентификаторы и классификаторы
- SCI
- Биология
Рост и выживаемость диких и культивируемых рыб во многом зависит от зрения и способности обнаружить и захватить добычу. Глаз является чрезвычайно важным органом чувств для большинства видов рыб и одним из наиболее уязвимых при негативном воздействии окружающей среды. В аквакультуре существует много факторов, способных вызвать временные или постоянные изменения роговицы, хрусталика, глазного яблока или конъюнктивы. В связи с этим состояние глаз имеет диагностическое значение и зачастую используется как индикатор здоровья рыб [1, 2].
Список литературы
1. Bruno D. W., Raynard R. S. The effect of water temperature on eye opacity in Atlantic salmon, Salmo salar L. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists. 1994; 14 (3): 86-88.
2. Hughes S. G. Nutritional eye diseases in salmonids: a review. Progressive Fish-Culturist. 1985; 47 (2): 81-85. %3C81:NEDIS%3E2.0.CO;2. DOI: 10.1577/1548-8640(1985)47
3. Ferguson H. Cataracts in fish - gross pathology and histopathology. Fish Pathology. 2022. https://fishhistopathology.com/?p=2697.
4. Марченко A. M., Родина Т. Е. Смешанная инфекция каспийской кумжи, вызванная Renibacteriumsalmoninarum и неизвестным фильтрующим агентом. Паразиты и болезни рыб: тезисы докладов IX Всесоюзного совещания по паразитам и болезням рыб (Петрозаводск, март 1991 г.). Л.: Зоологический институт АН СССР; 1990; 82-83.
5. Можарова А. И., Бычкова Л. И. Санитарно-эпизоотическое состояние лососевых рыбоводных заводов Северного бассейна. Рыбное хозяйство. Серия: Аквакультура: Болезни рыб. M.: ВНИЭРХ; 1996; (1): 1-7.
6. Мирзоева Л. М. Эпизоотическое состояние лососевых ферм Норвегии. Рыбное хозяйство. Серия: Болезни гидробионтов в аквакультуре. M.: ВНИЭРХ; 2001; (1): 31-35.
7. Hargis W. J. Disordes of the eye in finfish. Annual Review of Fish Diseases. 1991; 1: 95-117. %2891%2990025-F. DOI: 10.1016/0959-8030
8. Shahin K., Veek T., Heckman T. I., Littman E., Mukkatira K., Adkison M., et al. Isolation and characterization of Lactococcus garvieae from rainbow trout, Onchorhyncus mykiss, from California, USA. Transboundary and Emerging Diseases. 2022; 69 (4): 2326-2343. DOI: 10.1111/tbed.14250
9. Egusa S. Infectious diseases of fish. New Delhi: Amerind Publishing Co. Pvt. Ltd.; 1992. 696 p.
10. Bruno D. W., Noguera P. A., Poppe T. T. A colour atlas of salmonid diseases. Springer Dordrecht; 2013. 211 p. DOI: 10.1007/978-94-007-2010-7
11. Boerlage A. S., Elghafghuf A., Stryhn H., Sanchez J., Hammell K. L. Risk factors associated with time to first clinical case of Bacterial Kidney Disease (BKD) in farmed Atlantic salmon (Salmo salar L.) in New Brunswick, Canada. Preventive Veterinary Medicine. 2018; 149: 98-106. DOI: 10.1016/j.prevetmed.2017.11.014
12. Ferguson H. W., Hawkins L., MacPhee D. D., Bouchard D. Choroiditis and cataracts in Atlantic salmon (Salmo salar L.) recovering from subzero water temperatures. Veterinary Record. 2004; 155 (11): 333-334. DOI: 10.1136/vr.155.11.333
13. Bjerkas E., Waagbo R., Sveier H., Breck O., Bjerkâs I., Bjornestad E., Maage A. Cataract development in Atlantic salmon (Salmo salar L) in fresh water. Acta Veterinaria Scandinavica. 1996; 37 (3): 351-360. DOI: 10.1186/bf03548101
14. Рахконен Р, Веннерстрем П., Ринтамяки П., Каннел Р Здоровая рыба: профилактика, диагностика и лечение болезней. 2-е изд., перераб. и доп. Хельсинки: НИИ охотничьего и рыбного хозяйства, 2013. 177 с.
15. Мирзоева Л. М. Вирусное заболевание мозга и глаз молоди палтуса. Рыбное хозяйство. Серия: Аквакультура: Болезни рыб. M.: ВНИЭРХ; 1997; (2): 24-26. т
16. Doan Q. K., Vandeputte M., Chatain B., Morin T., Allal F. Viral encephalopathy and retinopathy in aquaculture: a review. Journal of Fish Diseases. 2017; 40 (5): 717-742. DOI: 10.1111/jfd.12541
17. Марченко А. М., Щелкунов И. С., Кадошников Ю. П. Обнаружение вирусоподобного агента в поражениях роговицы каспийской кумжи. Научно-технические проблемы марикультуры в стране: тезисы докладов Всесоюзной конференции (Владивосток, 23-28 октября 1989 г.). Владивосток; ТИНРО; 1989; 177-178.
18. Алексюк М. С., Алексюк П. Г., Богоявленский А. П., Аканова К. С., Молдаханов Е. С., Манакбаева А. Н. и др. Изучение разнообразия вирусов рыб в акватории центрального Каспийского моря методом метагеномного секвенирования. Вестник КазНУ. Серия экологическая. 2023; 75 (2): 65-77. DOI: 10.26577/EJE.2023.v75.i2.06
19. Aguilar M., Isla A., Barrientos C. A., Flores-Martin S. N., Blanco J. A., Enriquez R., et al. Genomic and proteomic aspects of p57 protein from Renibacterium salmoninarum: Characteristics in virulence patterns. Microbial Pathogenesis. 2023; 174:105932. DOI: 10.1016/j.mic-path.2022.105932
20. Kaur S., Kaur H., Kaur B., Naveen Kumar B. T., Tyagi A., Singh P., et al. Isolating pathogenic multidrug-resistant Aeromonas hydrophila from diseased fish and assessing the effectiveness of a novel lytic Aeromonas veronii bacteriophage (AVP3) for biocontrol. Microbial Pathogenesis. 2024; 196:106914. DOI: 10.1016/j.micpath.2024.106914
21. Irshath A. A., Rajan A. P., Vimal S., Prabhakaran V.-S., Ganesan R. Bacterial pathogenesis in various fish diseases: Recent advances and specific challenges in vaccine development. Vaccines. 2023; 11 (2):470. DOI: 10.3390/vaccines11020470
22. Карасева Т. А., Сердюк А. В., Логинова Г. А. Стрептококковая инфекция на лососевых хозяйствах Европейского Севера. Сборник научных трудов ГосНИОРХ. 1992; 331: 120-124.
23. Карасева Т. А. Стрептококкоз лососевых рыб. Рыбное хозяйство. Серия: Болезни гидробионтов в аквакультуре. M.: ВНИЭРХ; 2001; (1): 10-21.
24. Хоулт Дж., Криг Н., Снит П. Определитель бактерий Берджи. В 2-х т. Т. 1. М.: Мир; 1997. 432 с.
25. Luo X., Fu X., Liao G., Chang O., Huang Z., Li N. Isolation, pathogenicity and characterization of a novel bacterial pathogen Streptococcus uberis from diseased mandarin fish Siniperca chuatsi. Microbial Pathogenesis. 2017; 107: 380-389. https://doi.org/10.1016Zj.micpath.2017.03.049.
26. Sindermann C. J. Disease in marine aquaculture. Helgoländer Meeresuntersuchungen. 1984; 37 (1-4): 505-532. DOI: 10.1007/BF01989327
27. Noga E. J. Fish disease: Diagnosis and treatment. 2nd ed. Wiley-Black-well; 2010. 544 p. DOI: 10.1002/9781118786758
28. Austin B., Austin D. A. Bacterial fish pathogens. Diseases of farmed and wild fish. 4th ed. Chichester: Springer Praxis Publishing; 2007. 552 p. DOI: 10.1007/978-1-4020-6069-4
29. Egidius E. Vibriosis: Pathogenicity and pathology. A review. Aquaculture. 1987; 67 (1-2): 15-28. DOI: 10.1016/0044-8486(87)90004-4
30. Kent M. L., Poppe T. T. Infectious diseases of coldwater fish in marine and brackish water. In: Diseases and Disorders of Finfish in Cage Culture. Ed. by P. T. K. Woo, W. Bruno, L. H. S. Lim. 2nd ed. Oxfordshire: CAB International; 2002; 61-105. DOI: 10.1079/9780851994437.0061
31. Ларцева Л. В., Пивоваров Ю. П. Экологическая эпидемиология: монография. Астрахань: Астраханский государственный университет; 2007. 187 с.
32. Ларцева Л. В. Природная очаговость аэромонозов и вибриозов. Экологические проблемы природных и урбанизированных территорий: материалы III Международной научно-практической конференции (Астрахань, 20-21 мая 2010г.). Астрахань: Астраханский государственный университет; 2010; 123-126.
33. Висманис К. О., Луллу А. В., Йыгис В. А., Туровский А. М., Ыун А. И. Болезни лососевых в морских садках Прибалтики и их профилактика. В кн.: Биологические основы рыбоводства: паразиты и болезни рыб. М.: Наука; 1984; 56-63.
34. Карасева Т. А., Голикова Л. Н. Новые и редко встречающиеся болезни радужной форели (Parasalmo mykiss Walb.). Состояние и пути развития аквакультуры в Российской Федерации: материалы IVНациональной научно-практической конференции (Калининград, 8-10 октября 2019г.). Саратов: Амирит; 2019; 117-121.
35. Карасева Т. А. Патологии глаз у морских и пресноводных рыб Северного бассейна. Биологические ресурсы Белого моря и внутренних водоемов Европейского Севера: сборник материалов IV (XXVII) международной конференции (Вологда, 5-10 декабря 2005 г.). Ч. 1. Вологда: Вологодский ГПУ; 2005; 170-172.
36. Родина Т. Е. Поражения глаз лососевых рыб, обусловленные недостатком некоторых компонентов корма. Рыбное хозяйство. Серия: Рыбохозяйственное использование внутренних водоемов. M.: ВНИЭРХ; 1989; (4): 6-13.
37. Halver J. E., Smith R. R., Tolbert B. M., Baker E. M. Utilization of ascorbic acid in fish. Annals of the New York Academy of Sciences. 1975; 258 (1): 81-102. DOI: 10.1111/j.1749-6632.1975.tb29270.x
38. Wang K., Wang E., Qin Z., Zhou Z., Geng Y., Chen D. Effects of dietary vitamin E deficiency on systematic pathological changes and oxidative stress in fish. Oncotarget. 2016; 7 (51): 83869-83879. DOI: 10.18632/oncotarget.13729
39. Kubota S. S. Cataract in fishes: Pathological changes in the lens. Fish Pathology. 1976; 10 (2): 191-197. DOI: 10.3147/jsfp.10.191
40. Карасева Т. А., Голикова Л. Н. Оценка зараженности гранулированных кормов грибами и их роль в возникновении патологии у культивируемых лососевых рыб. Современная микология в России: материалы 4-го Съезда микологов России. (Москва, 12-14 апреля 2017 г.). 2017; 7: 167-169.
41. Лесников Л. А. Разработка нормативов допустимого содержания вредных веществ в воде рыбохозяйственных водоемов. Сборник научных трудов ГосНИОРХ. 1979; 144: 3-41.
42. Симаков Ю. Г., Никифоров-Никишин А. Л., Стебельков В. А., Архипов С. Ю. Изменения содержания элементов в хрусталике данио и окуня под влиянием загрязнения водной среды. Водные биоресурсы, воспроизводство и экология гидробионтов: сборник научных трудов. М.: ВНИИПРХ; 1992; 66: 92-96.
43. Никифоров-Никишин А. Л., Кулаев С. Н. Воздействие токсикантов на динамику вещества у рыб. Вторая Всесоюзная конференция по рыбохозяйственной токсикологии, посвященная 100-летию проблемы качества воды в России (Санкт-Петербург, ноябрь 1991 г.): тезисы докладов. СПб.: ГосНИОРХ; 1991; 71-74.
44. Никифоров-Никишин А. Л. Морфологические и биохимические аберрации в хрусталике глаза рыб под воздействием антропогенных факторов: автореф. дис канд. биол. наук. М.; 2000. 23 с.
Выпуск
Другие статьи выпуска
Введение. Микотоксины – вторичные метаболиты плесневых грибов, являются контаминантами, подлежат контролю. Согласно принятой классификации, по требованиям Директивы Совета Европейского союза 96/23ЕС, относятся к группе В3: «Прочие вещества и загрязнители окружающей среды». Информация о выявлении превышения предельно допустимых концентраций в кормах и пищевых продуктах вносится в информационную систему RASFF и ACN, функционирующую на территории стран Европейского союза.
Цель исследования. Анализ сведений о контаминации микотоксинами пищевой продукции и кормов за период с 2020 по 2022 г., зарегистрированных в информационной системе RASFF и ACN.
Материалы и методы. Объектом анализа были 1335 сообщений о превышении предельно допустимых концентраций микотоксинов (афлатоксинов, охратоксина А, дезоксиниваленола, зеараленона и патулина) в пищевых продуктах и кормах.
Результаты. Распределение случаев выявления микотоксинов в анализируемый период: афлатоксины – 87,1%, охратоксин А – 11,6%, патулин – 0,6%, дезоксиниваленол – 0,5%, зеараленон – 0,2%. Превышение предельно допустимой концентрации афлатоксинов чаще всего обнаруживали в арахисе (764 сообщения), охратоксина А – в сушеном инжире (43 сообщения), патулина – в яблочном соке (6 сообщений), зеараленона и дезоксиниваленола – в продукции из категории «крупы и хлебобулочные изделия». В кормах и кормовом сырье были выявлены несоответствия по содержанию исключительно афлатоксинов (33 сообщения), которые в 66,7% случаев обнаруживали в арахисе, предназначенном для кормовых целей. Анализ динамики контаминации продукции микотоксинами показал, что в 2021 и 2022 гг. наблюдали рост количества регистрируемых сообщений об их детекции.
Заключение. Согласно отчетам RASFF и ACN за 2020–2022 гг., микотоксины представляли третью по распространенности категорию опасности. Нарушение законодательства в части превышения предельно допустимых концентраций микотоксинов выявлено исключительно в продукции растительного происхождения.
Введение. Клостридиозы, несмотря на относительно спорадические случаи их возникновения, имеют повсеместное распространение и характеризуются высокой летальностью, что наносит экономический ущерб сельскому хозяйству. У крупного рогатого скота патогенные клостридии вызывают такие заболевания, как энтеротоксемия, злокачественный отек, столбняк, ботулизм. Этиологически значимыми видами клостридий являются Clostridium septicum, Clostridium perfringens, Clostridium chauvoei, Clostridium novyi, Clostridium sordellii.
Цель работы. Изучение видового разнообразия клостридий на основании исследований патолого-анатомического и секционного материала крупного рогатого скота из различных регионов России, определение мест их локализации в организме животных, а также антибактериальной устойчивости Clostridium perfringens к наиболее распространенным группам антибиотиков.
Материалы и методы. В период проведения исследования руководствовались общепринятыми нормативно-правовыми документами, методическими указаниями, рекомендациями, инструкциями; применяли микробиологические, масс-спектрометрические методы. Для определения антибактериальной устойчивости использовались различные группы препаратов: макролиды, монобактамы, пенициллины, полипептиды, гликопептиды, аминогликозиды, карбапенемы, линкозамиды, тетрациклины, ансамицины, диаминопиримидины, фузидины и др. Изоляты клостридий выделяли, используя рутинные бактериологические методы, видовую идентификацию выполняли с помощью времяпролетной масс-спектрометрии MALDI-ToF.
Результаты. При исследовании 359 образцов биоматериала было выделено и идентифицировано 137 изолятов клостридий (Paraclostridium bifermentans, Clostridium perfringens, Clostridium tertium, Clostridium butyricum, Clostridium septicum, Clostridium sporogenes, Clostridium cadaveris, Clostridium sphenoides, Clostridium cochlearium, Clostridium sartagoforme, Clostridium chauvoei, Clostridium novyi, Clostridium sordellii, Clostridium paraputrificum, Clostridium spp.), из которых 25 обладали патогенными и 17 – токсигенными свойствами. Чаще всего клостридии обнаруживали в печени, тонком и толстом отделах кишечника, мышцах. При этом выявлено превалирование Clostridium perfringens (17,5%). Установлена полирезистентность изолятов данного вида бактерии к цефиксиму, фузидиевой кислоте, цефотаксиму, цефаклору, спектиномицину, пиперациллину, кларитромицину, дорипенему, доксициклину.
Заключение. Полученные результаты могут быть использованы для модификации существующих протоколов лечения клостридиозов, корректировки состава иммунобиологических препаратов, разработки рекомендаций по использованию антибиотиков в животноводстве для снижения рисков развития антимикробной резистентности.
Введение. При снижении компенсаторных механизмов резистентности организма, изменении состава эволюционно сложившихся микробиоценозов избыточному росту патогенных микроорганизмов способствует репрезентация сигнальных молекул quorum sensing. Антибактериальный потенциал ингибиторов синтеза молекул межклеточных коммуникаций достигается за счет снижения адгезии микроорганизмов, а соответственно, и степени контаминации in vivo и in vitro.
Цель исследования. Изучение динамики изменений морфометрических и денситометрических показателей биопленок изолятов Escherichia coli, Escherichia albertii, Proteus vulgaris, идентифицированных при болезнях органов дыхания и пищеварения птиц.
Материалы и методы. Исследовали динамику развития биопленок референтных штаммов и изолятов, выделенных из патматериала птицы: куры кросса ROSS-308 40–42-недельного возраста (n = 20). Оптическую плотность исследуемых образцов определяли с применением фотометрического анализатора Immunochem-2100 (HTI, США), длина волны 580 нм (OD580). Морфометрические показатели учитывали при достоверной частоте встречаемости ≥ 90,0% поля зрения оптического микроскопа H604 Trinocular Unico (United Рroducts & Instruments Inc., США) и сканирующего электронного микроскопа Hitachi TM3030 Plus (Hitachi, Япония).
Результаты. Из патматериала птиц с признаками катарально-геморрагического аэросаккулита, геморрагического энтерита, фибринозного полисерозита и спленомегалии были выделены и идентифицированы Escherichia coli, Escherichia albertii, Proteus vulgaris. В зависимости от времени культивирования установлены прямые коррелятивные зависимости (r = 0,91) между морфометрическими и денситометрическими показателями. При дисперсии гетерогенной популяции доминируют клетки с дефектной клеточной стенкой, сферопласты, игольчатые и гигантские структуры, а также клетки-ревертанты.
Заключение. Общие закономерности динамики развития гетерогенной популяции микроорганизмов опосредованы адгезией, синтезом экзоцеллюлярных молекул, интенсивной пролиферацией и дифференциацией клеток в зависимости от стадии клеточного цикла.
Введение. В настоящий момент на базе подведомственного Россельхознадзору Федерального центра охраны здоровья животных (ФГБУ «ВНИИЗЖ», г. Владимир) разработана в соответствии с требованиями законодательства Российской Федерации вакцина против чумы плотоядных, парвовирусного и коронавирусного энтеритов, аденовирусной инфекции и бешенства собак «Карникан-5R». Для ее создания были использованы штаммы вирусов, циркулирующие на территории страны и актуальные в настоящее время.
Цель исследования. Изучение антигенных свойств вакцины «Карникан-5R» на целевых животных: определение срока формирования гуморального иммунитета и продолжительности иммунитета на протяжении периода наблюдения.
Материалы и методы. В исследовании использовали ассоциированную вакцину «Карникан-5R», состоящую из двух компонентов: лиофилизированного и жидкого. В качестве животных моделей для изучения антигенных свойств препарата служили собаки 10–12-недельного возраста. Уровень антител оценивали в реакции нейтрализации, реакции торможения гемагглютинации и реакции нейтрализации методом FAVN (Fluorescent Antibody Virus Neutralization).
Результаты. Установлено, что вакцинация собак индуцировала выработку антител к возбудителям указанных инфекций. Двукратное введение вакцины «Карникан-5R» с интервалом 21 сут стимулировало формирование напряженного гуморального ответа к 35-м сут после первого введения и прирост титра антител к вирусу чумы плотоядных в 8,6 раза, к парвовирусу собак типа 2 – в 2,1 раза, к коронавирусу собак – в 5,0 раза, к аденовирусу собак серотипа 2 – в 5,36 раза, к вирусу бешенства – в 5,72 раза. Продолжительность специфического иммунитета составила не менее 12 мес. с сохранением протективного уровня титра вирусспецифических антител к указанным возбудителям.
Заключение. Вакцина «Карникан-5R» безвредна и ареактогенна для целевых животных, способствует формированию у собак напряженного иммунитета продолжительностью не менее 12 мес. с момента бустерной вакцинации.
Введение. Мастит крупного рогатого скота является одним из наиболее распространенных и экономически значимых заболеваний в молочном животноводстве. Для его диагностики предложены три хромогенные среды, каждая из которых предназначена для выделения и дифференциации определенных групп возбудителей мастита: среда I – для бактерий семейства Enterobacteriaceae, среда II – для микроорганизмов рода Staphylococcus, среда III – для бактерий рода Streptococcus. Цель исследования. Оценка чувствительности, специфичности, дифференцирующих и ингибирующих свойств хромогенных сред, а также их апробация на образцах молока от коров с маститом.
Материалы и методы. Для оценки чувствительности использовали контрольные штаммы Streptococcus agalactiae, Staphylococcus aureus и Escherichia coli в различных концентрациях (1 × 100, 1 × 101, 1 × 102 КОЕ/мл). Рост микроорганизмов оценивали через 24 ч инкубации при 37 °C. Специфичность и дифференцирующие свойства изучали на 22 штаммах микроорганизмов, сравнивая их рост и цвет колоний на хромогенных и контрольной средах. Ингибирующие свойства оценивали по наличию или отсутствию роста культур. Апробацию сред проводили с использованием образцов молока от коров с маститом, используя стандартизированные методы посева и культивирования.
Результаты. Хромогенные среды показали сопоставимую с контрольной средой (колумбийский агар с добавлением 5% дефибринированной крови барана) чувствительность (p > 0,05). Среда I обеспечила дифференциацию микроорганизмов по цвету колоний, но имела низкие ингибирующие свойства. Среда II избирательно выделяла стафилококки, подавляя рост других бактерий. Среда III поддерживала рост энтерококков и стрептококков, в том числе Streptococcus agalactiae. Апробация на образцах молока подтвердила возможность дифференциации культур до вида.
Заключение. Разработанные хромогенные среды обеспечивают высокую точность диагностики мастита, сочетая чувствительность, специфичность и дифференцирующие свойства. Их комплексное использование позволяет охватить широкий спектр микроорганизмов и избирательно выделить целевые группы бактерий. Дальнейшая работа будет направлена на улучшение сред для подавления роста грибов и повышения точности диагностики.
Введение. При диагностике туберкулеза неспецифические реакции на туберкулин являются одной из наиболее важных проблем, увеличивающихся с каждым годом. Учитывая сложную ситуацию, в том числе и эпидемиологическую, совершенствование методов диагностики туберкулеза крупного рогатого скота является весьма актуальным.
Цель исследования. Разработка эффективного комплексного метода дифференциальной диагностики туберкулеза крупного рогатого скота и внедрение усовершенствованной схемы выявления инфекции в хозяйствах с различным эпизоотическим состоянием в условиях Республики Дагестан.
Материалы и методы. Аллергическим исследованиям подвергли 1670 гол. крупного рогатого скота, серологическим – 3502 образца сывороток крови, иммунологическим – 112 проб, бактериологическим – 57 проб патматериала, отобранного от животных, и 76 проб – из объектов внешней среды. В исследовании использовали штаммы культур Mycobacterium bovis, Mycobacterium bovis БЦЖ, Mycobacterium avium, Mycobacterium scrofulaceum.
Результаты. Установлено широкое распространение неспецифических реакций во всех категориях хозяйств республики. Определена диагностическая ценность внутрикожной и внутривенной проб в неблагополучных по туберкулезу стадах, где число дополнительно выявляемых больных составило 9,4%. Реакция связывания комплемента имеет низкую чувствительность и высокую специфичность. Результаты реакции непрямой гемагглютинации в большинстве случаев не подтверждаются классическими методами, что определяет ее низкую специфичность. Из 57 проб биоматериала было изолировано и идентифицировано 39 культур микобактерий: 8 (20,5%) – M. bovis; 31 (79,5%) – нетуберкулезные кислотоустойчивые виды, из которых 29 (93,5%) относятся к II группе по классификации Раньона, 2 (6,5%) – к III группе. Из 76 проб объектов внешней среды изолированы 43 культуры, из которых 2 (4,6%) отнесены к Mycobacterium bovis, 23 (53,5%) – ко II группе и 18 (41,9%) – к III группе по классификации Раньона. Наилучшими ростовыми и ингибирующими постороннюю микрофлору свойствами обладает яичная среда Левенштейна – Йенсена.
Заключение. Полученные данные являются базисной основой для разработки эффективного комплексного метода дифференциальной диагностики туберкулеза крупного рогатого скота.
Введение. Наиболее эффективной стратегией борьбы с африканской чумой свиней остается проведение комплекса противоэпизоотических мероприятий, направленных на предотвращение заноса и распространение возбудителя данной болезни. В настоящее время существует широкий спектр коммерческих дезинфицирующих средств, применяемых на объектах ветеринарного надзора, эффективность которых в отношении вируса африканской чумы свиней неизвестна и подтверждается только заверениями производителей, которые не всегда предоставляют обоснованные доказательства.
Цель исследования. Лабораторные испытания вирулицидной активности различных дезинфицирующих препаратов в отношении возбудителя африканской чумы свиней.
Материалы и методы. Исследовано 12 образцов дезинфицирующих средств с различным химическим составом. Первый этап по оценке свойств in vitro проводили суспензионным методом путем добавления к жидкофазному вируссодержащему материалу рабочих растворов испытуемых препаратов в экспериментальных концентрациях и при различном времени экспозиции. Второй этап осуществлялся посредством тестирования смывов с контаминированных вирусом африканской чумы свиней тест-пластин из бетона после их обработки рабочими растворами дезсредств. Каждый этап проводили в двух вариантах: без органического загрязнения и с его имитацией (экспозиция инактивированной сыворотки крови крупного рогатого скота на тест-поверхности). Образцы исследовали методом вирусовыделения в чувствительной культуре клеток селезенки свиньи. Учет и интерпретацию результатов проводили в реакции гемадсорбции. Считали, что образец препарата обладал вирулицидной активностью при отсутствии репродукции вируса африканской чумы свиней.
Результаты. Вирулицидным эффектом в отношении референтного штамма Arm 07 вируса африканской чумы свиней (II генотип) при испытаниях на тест-поверхностях обладали 9 из 12 испытуемых препаратов, что свидетельствует о необходимости проведения дальнейших исследований по оценке действенности различных дезинфицирующих средств в отношении данного возбудителя.
Заключение. Возможность присутствия в коммерческом обороте дезсредств, неспособных при заявленных в инструкции условиях инактивировать вирус африканской чумы свиней, подчеркивает необходимость совершенствования нормативно-правовых актов в целях обеспечения эффективности мер общей профилактики и борьбы с болезнью.
Введение. В Бурунди, где 80% жителей занимается животноводством, преобладают отрасли с коротким циклом воспроизводства (свиноводство, птицеводство). Несмотря на государственные меры поддержки и ежегодный прирост численности поголовья свиней, в стране не удается обеспечить население животноводческой продукцией в полной мере. Это связано с тем, что в отрасли существует немало проблем, среди которых первое место занимают заразные болезни животных. Вспышки инфекционных заболеваний могут иметь катастрофические последствия для населения страны, связанные с подрывом продовольственной безопасности, потерей доступа к животному белку, повышением себестоимости животноводческого производства из-за необходимости применения дорогостоящих мер по борьбе с заболеваниями, последствиями для здоровья человека в случае возникновения зоонозов.
Цель исследования. Изучение нозологического профиля заразной патологии свиней, выявление причин, способствующих инфицированию животных, и оценка эпизоотической ситуации по роже свиней в Республике Бурунди за период с 2018 по 2023 г.
Материалы и методы. Для анализа эпизоотической обстановки по заразным болезням свиней использовали данные ежегодных отчетов Генерального управления животноводства, а также результаты исследований Национальной ветеринарной лаборатории Республики Бурунди за 2018–2023 гг. В процессе работы выполняли ретроспективный и эпизоотологический анализ, применяли методы вариационной статистики.
Результаты. Проведенный анализ показал широкое распространение паразитарных болезней свиней, что связано с особенностями экваториального климата. В общей структуре заразных болезней инвазии занимают лидирующее место с ростом от 81,2% в 2018 г. до 92,8% в 2023 г. На втором месте по распространению находятся инфекционные болезни бактериальной этиологии – от 3,6% в 2018 г. до 6,3% в 2023 г. Выявлено стабильно растущее число случаев рожи свиней: в 2023 г. зарегистрировано в 1,7 раза больше случаев по сравнению с 2022 г. и в 7 раз больше по сравнению с 2020 г. При этом с каждым годом возрастает количество провинций, где выявляют данное заболевание. В настоящее время в 12 из 18 провинций Бурунди регистрируется рожа свиней.
Заключение. Республика Бурунди ежегодно несет большие убытки от гибели животных в результате вспышек заболеваний инфекционной природы. При отсутствии в стране специфической профилактики заразных болезней, в частности рожи, слабом контроле со стороны ветеринарной службы за перемещениями животных между домовладениями инфекции быстро распространяются. Поэтому изучение эпизоотической ситуации и разработка мер для ее стабилизации в конкретных условиях является важной научной и практической задачей для обеспечения биологической и продовольственной безопасности.
Введение. Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота широко распространена во всех странах мира, в том числе и в Российской Федерации. Этиологический агент – Orthopneumovirus bovis, относящийся к семейству Pneumoviridae, роду Orthopneumovirus. Крупный рогатый скот – основной резервуар вируса. Цель исследования. Целью данного обзора литературы являлось обобщение и анализ опубликованных данных об особенностях клинического проявления, патогенеза и молекулярной эпизоотологии возбудителя респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота.
Материалы и методы. Информационной базой для проведения исследования служили публикации из наиболее авторитетных отечественных (eLIBRARY. RU) и иностранных (Web of Science, Scopus, PubMed) источников, а также результаты собственных исследований, опубликованных в литературе.
Результаты. Заболеванию подвержены животные всех возрастов, наиболее тяжело протекает инфекция у телят в возрасте до 6 месяцев. Заболеваемость поголовья составляет в среднем 60–80%. Характер течения инфекции варьирует от бессимптомного и легкого до тяжелого заболевания нижних дыхательных путей, включая эмфизему, отек легкого, интерстициальную пневмонию и бронхопневмонию, при этом уровень смертности среди телят может достигать 20%, а у взрослых животных чаще регистрируют субклиническую форму. Вирус оказывает мощное иммуномодулирующее действие. Тяжелые повреждения дыхательных путей опосредованы в основном гиперактивностью иммунного ответа, а не самой репликацией вируса. Вирус повышает восприимчивость телят к вторичным инфекциям и способствует колонизации нижних дыхательных путей бактериями. В настоящее время с помощью филогенетического анализа нуклеотидных последовательностей генов G и N выявлено десять генетических подгрупп вируса (I–X), между которыми существует географическая корреляция. В таких регионах, как Урал, Сибирь, а также в Республике Казахстан среди крупного рогатого скота циркулируют изоляты вируса генетических подгрупп II и III.
Заключение. В обзоре представлены актуальные данные об этиологии, особенностях патогенеза и клинического проявления респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота, а также генетическом разнообразии возбудителя в мире, Российской Федерации и Республике Казахстан.
Введение. Глобальное распространение африканской чумы свиней, смертельно опасного вирусного геморрагического заболевания домашних свиней и диких кабанов, диктует необходимость применения эффективных мер предупреждения и раннего выявления вспышек. Контроль численности популяции, а также поиск туш диких кабанов, погибших от африканской чумы свиней и являющихся источником передачи вируса, считаются приоритетными мерами в управлении заболеванием в дикой природе.
Цель исследования. Обобщение имеющихся в настоящее время знаний о передовых технологиях применения беспилотных летательных аппаратов (дронов) в условиях дикой природы в сочетании с методами искусственного интеллекта. Материалы и методы. При выполнении работы применялись аналитические методы исследований с использованием баз данных PubMed, Springer, Wiley Online Library, Google Scholar, CrossRef, РИНЦ, еLIBRARY, CyberLeninka.
Результаты. В данном обзоре рассматривается возможность применения беспилотных летательных аппаратов (дронов) и искусственного интеллекта (нейронных сетей) для обнаружения диких кабанов и их останков в контексте борьбы с африканской чумой свиней. Подробно обсуждается роль диких кабанов в распространении заболевания и необходимость контроля их популяции, значение своевременного удаления трупов кабанов, при этом подчеркивается важность использования современных технологий для учета численности и плотности популяции дикого кабана. Проанализирована информация о применении дронов, оснащенных различными техническими средствами, при изучении популяций крупных видов животных в условиях дикой природы, отмечены преимущества и особенности использования беспилотных летательных аппаратов. Также обобщен опыт применения нейронных сетей в контексте автоматической обработки полученных с помощью дронов изображений животных.
Заключение. Интеграция беспилотных летательных аппаратов и искусственного интеллекта, вероятно, может стать ключевым инструментом в контроле популяции дикого кабана и быстром обнаружении туш кабанов, погибших вследствие африканской чумы свиней, что в целом позволит повысить эффективность мер, направленных на борьбу с данным заболеванием.
Введение. Репродуктивно-респираторный синдром свиней (РРСС), вызываемый вирусом из семейства Arteriviridae, является одной из наиболее экономически значимых болезней свиней во многих странах мира. Основные проявления заболевания включают репродуктивную дисфункцию у свиноматок, которая проявляется абортами на поздних сроках беременности, ранними или отсроченными опоросами, рождением слабых или нежизнеспособных поросят, нерегулярным эструсом; реже сообщается о патологиях на ранних и средних сроках беременности. У поросят и откормочных свиней наблюдается респираторный дистресс-синдром: кашель, чихание, одышка, задержка роста. Кроме того, заражение вирусом РРСС приводит к снижению респираторного иммунитета, что делает инфицированных свиней более восприимчивыми к вторичным инфекциям и повышает смертность среди поголовья. В настоящем обзоре представлена актуальная информация о текущем состоянии лабораторной диагностики и специфической профилактики РРСС, а также рассмотрены перспективные биотехнологические платформы для конструирования вакцин нового поколения.
Цель исследования. Рассмотреть и обобщить современные подходы к диагностике и профилактике репродуктивно-респираторного синдрома свиней.
Материалы и методы. Материалом для аналитического исследования послужили научные публикации зарубежных и отечественных авторов.
Результаты. Приведена нозологическая характеристика заболевания, рассмотрены особенности клинических проявлений, эпизоотологии, организации генома возбудителя. Описаны и обсуждены применяемые в ветеринарной практике классические и современные методы лабораторной диагностики, а также коммерчески доступные препараты для специфической профилактики РРСС и перспективные биотехнологические платформы для создания вакцин нового поколения, которые позволят достичь оптимального баланса между безопасностью и эффективностью. На текущем этапе изучения патогенеза РРСС существуют три основные проблемы в разработке вакцин: недостаточность сведений о механизмах иммунной защиты, способность вируса индуцировать негативные регуляторные сигналы для иммунной системы и значительная антигенная изменчивость возбудителя.
Заключение. Штаммы вируса РРСС демонстрируют значительную генетическую и антигенную гетерогенность и часто подвергаются рекомбинациям, что усугубляет проблемы эпизоотологии, профилактики и контроля заболевания. Дальнейшее углубленное изучение особенностей иммунного ответа организма-хозяина, а также идентификация Т- и B-клеточных эпитопов в структуре возбудителя позволит обеспечить рациональный дизайн генно-инженерных вакцин.
Издательство
- Издательство
- ФГБУ «ВНИИЗЖ»
- Регион
- Россия, Владимир
- Почтовый адрес
- Россия, 600901, г. Владимир, мкр. Юрьевец
- Юр. адрес
- 600901, ВЛАДИМИРСКАЯ ОБЛАСТЬ, Г. ВЛАДИМИР, МКР ЮРЬЕВЕЦ, МКР. ЮРЬЕВЕЦ
- ФИО
- Рыбин Роман Николаевич (Руководитель)
- E-mail адрес
- arriah@fsvps.gov.ru
- Контактный телефон
- +7 (903) 8991501
- Сайт
- https://arriah.ru